Procedimientos Experimentales con Animales
Al finalizar los estudios satisfactoriamente, el alumno recibirá un diploma acreditativo de título propio conforme ha realizado el curso en IMASD (formación Dirigida a la Acreditación de las Competencias Profesinales R.D. 1224/2009)
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TEMARIO
- MÓDULO 1. PROCEDIMIENTOS EXPERIMENTALES CON ANIMALES
UNIDAD FORMATIVA 1. INVESTIGACIÓN CON ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. UTILIZACIÓN DE ANIMALES COMO MODELOS EXPERIMENTALES
- Justificación de experimentación con animales de laboratorio:
- – Referencias históricas, momentos y personajes claves en la utilización de animales como modelos experimentales
- – Logros conseguidos en las ciencias biomédicas
- – Búsqueda de otras alternativas. Razones científicas y éticas
- Principio de las 3Rs:
- – Reducción
- – Refinamiento
- – Reemplazo
- Clasificación de los métodos alternativos:
- – Modelos computerizados de predicción «in silico»
- – Uso de organismos inferiores.
- – Uso de huevos
- – Métodos «in Vitro»
- – Otros
- Aspectos éticos y normativos de los cuidados proporcionados a los animales de experimentación.
- – Transformación, limitación y percepción social
- – Actitud del investigador frente al animal como sujeto
- – Reconocimiento del animal como reactivo biológico
- – Obtención de animales biológicamente estandarizados
- Normativa sobre protección de animales utilizados para experimentación y otros fines científicos: seguridad, administración, transporte, recepción, aprovisionamiento de animales y eliminación de los cadáveres.
- – Control social de la investigación
- – Legislación Nacional y Europea
- – Aspectos básicos de legislación
- – Objetivo de la legislación
- Normativa sobre: acreditación, elaboración y cumplimiento de los procedimientos de los laboratorios de ensayos clínicos.
- – Seguimiento de Protocolos Normalizados de Procedimientos
- Prevención de riesgos laborales en los procedimientos experimentales con animales:
- – Niveles de bioseguridad
- – Técnicas y prácticas de laboratorio
- – Equipos de seguridad biológica.
- Análisis de signos y comportamiento animal anómalos que interfieran en los procedimientos.
- – Detección del dolor, signos de sufrimiento y angustia de animales de experimentación, siguiendo Protocolos Normalizados de revisión
- – Conocimiento del aspecto normal de las distintas especies animales
- – Pautas de observación del animal: Aspecto exterior, sonidos, movimientos, comportamiento y relación social
- – Observación de la jaula o habitáculo, del lecho, cantidad de comida y agua ingerida, etc.
- – Determinación cualitativa de la alteración de parámetros fisiológicos: pérdida o aumento de peso, ritmo de la respiración, temperatura, etc.
UNIDAD DIDÁCTICA 2. ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS EN LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
- Administración de sustancias:
- – Soluciones a administrar, principales solventes.
- – Características de las soluciones, concentración, osmolaridad y pH.
- Clasificación de las vías de administración de sustancias:
- – Enteral
- – Parenteral
- – Tópica
- – Inhalatoria
- Factores para la elección de la vía:
- – Velocidad de absorción de sustancias
- – Tolerancia
- – Facilidad de su administración según recursos materiales y humanos
- Relación de material existente en el mercado:
- – Jeringas, conexiones, catéteres y sondas
- – Agujas: tipos y escala de medición
- – Bombas de infusión mecánicas y electrónicas
- – Bombas de infusión osmótica o volumétricas
- – Pomadas y geles
- – Vaporizadores y nebulizadores
- Selección del material necesario para la administración de sustancias en función de:
- – Sustancia a administrar.
- – Volumen
- – Especie animal
- – Vía de inoculación
- Volumen máximo de inyección según:
- – Especie animal
- – Vía de administración
- Inmovilización de los animales para la administración de sustancias.
- – Manejo e inmovilización minimizando estrés
- – Material de inmovilización
- Administración crónica de sustancias.
- – Sistemas de infusión continua: anclados y ambulatorios
UNIDAD DIDÁCTICA 3. OBTENCIÓN DE FLUIDOS Y TEJIDOS CORPORALES DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
- Extracción de sangre:
- – Volumen máximo de extracción, según vía y especie animal
- – Técnica de recogida de sangre
- Métodos de extracción de sangre, ventajas e inconvenientes:
- – Exanguinación
- – Decapitación
- – Del corazón
- – De venas
- – De arterias
- – Métodos no recomendados de venopunción
- – Obtención repetida de sangre: Cateterización
- Formas de obtención de otros fluidos corporales:
- – Heces y orina: jaulas metabólicas o sondas
- – Líquido cefalorraquídeo
- – Bilis
- – Linfa.
- – Líquido ascítico
- Realización de eutanasia
- – Definición y aspectos relacionados
- – Métodos de eutanasia adecuados según la especie y la experimentación
- – Identificación de equipos, instrumental y Materiales necesarios
- Asistencia a una necropsia:
- – Técnicas de necropsia siguiendo procedimientos establecidos
- – Preparación del instrumental y material necesarios
- – Recogida de muestras
- – Registro de datos
- Conocimiento de la normativa de:
- – Protección frente a agentes químicos, biológicos y radiológicos
- – Tratamiento y eliminación de residuos
- Acciones para una correcta gestión de residuos:
- – Segregación (recogida selectiva).
- – Transporte y almacenamiento en la instalación
- – Tratamiento previo a la eliminación
- – Eliminación del residuo en la instalación productora o gestor autorizado
UNIDAD DIDÁCTICA 4. REGISTRO DE DATOS DE INVESTIGACIÓN EN EXPERIMENTACIÓN ANIMAL
- Monitorización: determinación y registro de variables fisiológicas
- – Exploración clínica: observación palpación y auscultación
- – Uso de equipos: Métodos invasivos y no invasivos
- Análisis de los resultados obtenidos en un procedimiento experimental
- – Uso de programas informáticos específicos para el procedimiento experimental.
- – Análisis estadístico en función del tipo de parámetro
- Registro de tratamientos o de administración de sustancias y de obtención de muestras.
- – Establecimiento previo al procedimiento del sistema de recogida de datos
- – Características de un registro de datos: escrito o automatizado, duradero (copias de seguridad), completo, accesible, hojas específicas o bases de datos debidamente confeccionadas según datos, normalizados, establecer responsable de la conservación del archivo, etc.
- Clasificación de los sistemas de instrumentación según sus objetivos:
- – De adquisición de la información
- – Diagnósticos
- – De evaluación
- – De monitorización y control
- Identificación de los componentes del sistema global animal-instrumento:
- – Animal: diferentes generadores de señales
- – Estímulos: Visuales, acústicos, táctiles, eléctricos, etc.
- – Transductor: sensibilidad, linealidad, respuesta en frecuencias (lineal, integrador y diferenciador) y rendimiento
- – Equipo de tratamiento o procesado de una señal
- – Equipo de presentación, lectura o registro: registros mecánicos o electrónicos
- – Equipo de control automático de los estímulos, de los transductores, etc.
- Problemas y soluciones en la medición de la actividad de los seres vivos:
- – Inaccesibilidad de las variables
- – Variabilidad de los datos
- – Interrelaciones entre variables
- – Interacción entre órganos y sistemas
- – Efecto del transductor sobre la medición a realizar
- – Artefactos en las medidas
- – Limitaciones de la energía
- Utilización de transductores para la medida de las principales variables biológicas:
- – Temperatura
- – Fuerza, desplazamiento, velocidad y aceleración
- – Presión sanguínea
- – Volumen y presión respiratoria
- – Flujo en gases
- – Flujo en líquidos
- Medición de señales biológicas por biotelemetría:
- – Objetivo
- – Ventajas
- – Componentes de un sistema de biotelemetría
- Utilización de procedimientos no quirúrgicos con equipos específicos de estudio o medida de variables:
- – Diagnóstico por imagen.
- – Telemetría
- – Estudios de comportamiento
- – Pletismografía
- – Otros métodos no invasivos
UNIDAD FORMATIVA 2. ANESTESIA Y ANALGESIA EN ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. ANESTESIA DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
- Anestesia: Definición y objetivos.
- Componentes de la anestesia general y su influencia en los resultados experimentales:
- – Hipnosis o sueño
- – Analgesia o ausencia de dolor
- – Relajación muscular
- – Bloqueo de la actividad refleja
- – Anestésico ideal
- Elección de la técnica anestésica en función de:
- – La especie animal
- – Estado del animal y objetivo de la investigación
- – Tipo de procedimiento
- – Duración del procedimiento
- – Experiencia del técnico y equipo disponible
- Establecimiento de las fases de una técnica anestésica:
- – Ayuno
- – Preanestesia. Tranquilizantes y anticolinérgicos.
- – Anestesia. Inducción y mantenimiento anestésicos
- – Postanestesia
- Administración de anestésicos inyectables:
- – Fármacos y dosis de los mismos
- – Vías y modo de administración
- Administración de anestésicos inhalatorios:
- – Equipamiento
- – Tipos de anestésicos inhalatorios
- – Eliminación de gases anestésicos.
- Medidas de soporte durante la anestesia:
- – Intubación endotraqueal e instauración de ventilación artifical
- – Implantación de una vía venosa permanente
- Recuperación anestésica:
- – Pautas para una recuperación normal
- – Reversión de la anestesia, utilización de antagonistas
- Monitorización de:
- – El plano anestésico. Respuesta refleja.
- – La oxigenación, circulación y ventilación durante la anestesia.
- – La temperatura.
- Identificación de las principales complicaciones anestésicas y su tratamiento.
- – Extrapolación de una especie a otra
- – Adecuación de la profundidad anestésica a las necesidades de la cirugía
- – Utilidad de anestesia inhalatoria
UNIDAD DIDÁCTICA 2. ANALGESIA DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
- Analgesia: Definición y ventajas de su utilización
- Reconocimiento y evaluación del dolor:
- – Escalas de severidad (gravedad o intensidad de dolor)
- – Signos clínicamente valorables: cambios en la actividad, aspecto, temperatura, ingesta, variables fisiológicas y vocalizaciones.
- Técnicas de analgesia:
- – Principales fármacos analgésicos
- – Analgesia polimodal o multimodal
- – Analgesia preventiva
- – Analgesia local y regional
UNIDAD FORMATIVA 3. TÉCNICAS QUIRÚRGICAS BÁSICAS EN ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. PREPARACIÓN DE LA CIRUGÍA EN EXPERIMENTACIÓN ANIMAL
- Planificación de la cirugía:
- – Elección y disponibilidad de los animales
- – Valoración preoperatoria del estado sanitario del animal
- – Preparación del animal
- – Comprobación de la disponibilidad de instalaciones quirúrgicas y pre- y post-operatorias
- – Elección y preparación del instrumental quirúrgico, aparatos y accesorios
- – Preparación del cirujano
- Selección del material quirúrgico:
- – Agujas quirúrgicas.
- – Material de sutura. Sutura absorbible y no absorbible.
- – Otros accesorios quirúrgicos.
- Anatomía y fisiología general de órganos y sistemas de los animales de laboratorio.
- – Datos anatómicos, fisiológicos y biológicos de los animales más utilizados en investigación
UNIDAD DIDÁCTICA 2. APLICACIÓN DE TÉCNICAS QUIRÚRGICAS BÁSICAS EN PROCEDIMIENTOS EXPERIMENTALES
- Conocimiento de técnicas quirúrgicas básicas en experimentación animal:
- – Corte de la piel y otros tejidos
- – Control del sangrado y de la desecación de tejidos y órganos
- – Técnicas y nudos de sutura
- Aprendizaje de las técnicas quirúrgicas más comunes en la rata:
- – Laparotomía
- – Accesos a grandes vasos: vena yugular y arteria carótida
- – Ovariohisterectomía
- – Cesárea
- – Castración: ovariectomía y orquiectomía
- Procedimientos quirúrgicos de obtención de muestras biológicas.
- – Extracción de tejidos sólidos y realización de una biopsia.
- – Perfusión de tejidos y órganos.
- Supervisión y cuidados postoperatorios:
- – Cuidados de la herida
- – Complicaciones quirúrgicas postoperatorias
- Protocolos de supervisión y determinación de criterios de punto final postquirúrgico de los animales.
- – Supervisión diaria de la herida, desinfección y empleo de antibióticos.
- – Utilización de analgesia postoperatoria
- – Aplicación diaria de escalas de severidad
- – Determinación del punto final y eutanasia
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